Efeito do extrato aquoso de alecrim (Rosmarinus officinalis L.) sobre o estresse oxidativo em ratos diabéticos
Palavras-chave:
Antioxidantes, Compostos fenólicos, Diabetes mellitus, Enzimas, RosmarinusResumo
Objetivo
Avaliar o efeito do extrato aquoso de alecrim sobre o estresse oxidativo em ratos diabéticos.
Métodos
O extrato aquoso de alecrim foi obtido por método sequencial. Os fenólicos totais foram determinados pelo método de Folin Ciocateau e a atividade antioxidante in vitro foi determinada através de três métodos: β-caroteno/ácido linoleico, varredura do radical 2,2 Difenil 1-Picril hidrazil e oxigen radical absorbance capacity. Ratos Wistar machos foram distribuídos em 5 grupos: controle, diabético, e três grupos de animais diabéticos tratados com extrato aquoso de alecrim em concentrações diferentes: 25, 50 ou 100mg/kg por via oral durante 30 dias. O diabetes foi induzido por estreptozotocina e, no final do experimento, foi coletado sangue para avaliar o percentual de hemoglobina glicada e os tecidos hepático e cerebral para determinação das enzimas antioxidantes: superóxido dismutase, catalase, glutationa peroxidase e glutationa redutase.
Resultados
Constatou-se que o extrato aquoso de alecrim apresentou altos teores de compostos fenólicos totais e expressiva atividade antioxidante in vitro nos três métodos de avaliação. O extrato aquoso de alecrim na concentração de 50mg/kg diminuiu o percentual de hemoglobina glicada e aumentou a atividade das enzimas catalase e glutationa peroxidase no fígado, e da superóxido dismutase no cérebro de ratos diabéticos. No entanto, não foi observado efeito dose-resposta nas demais concentrações analisadas.
Conclusão
O extrato aquoso de alecrim apresenta significativa capacidade antioxidante in vitro, atribuída à presença de compostos fenólicos em sua composição. E, quando administrado em ratos na concentração de 50mg/kg,
demonstrou-se eficiente na atenuação do estresse oxidativo presente no diabetes experimental.
Referências
Wild S, Roglic G, Green A, Sicree R, King H. Global prevalence of diabetes: estimates for the year 2000 and projections for 2030. Diabetes Care. 2004; 27(5):1047-53.
Rocha FD, Teixeira VL, Pereira RC, Kaplan MAC. Diabetes mellitus e estresse oxidativo: produtos naturais como alvo de novos modelos terapêuticos. Rev Bras Farm. 2006; 87(2):49-54.
Sociedade Brasileira de Diabetes. Consenso Brasileiro sobre Diabetes 2002: diagnóstico e classificação do diabetes melito e tratamento do diabetes melito do tipo 2. Rio de Janeiro; 2003 [acesso 2008 maio]. Disponível em: <http://neu.saude.sc.gov.br/arquivos/consenso_diabete_sbd_2002.pdf>
Packer L, Kraemer K, Rimbach G. Molecular aspects of lipoic acid in the prevention of diabetes complications. Nutrition. 2001; 17(10):888-95.
Brownlee M. The pathobiology of diabetic complications: a unifying mechanism. Diabetes. 2005; 54(6):1615-25.
Lapolla A, Fedele D, Traldi P. Glyco-oxidation in diabetes and related diseases. Clin Chim Acta. 2005; 357(2):236-50.
Rolo AP, Palmeira CM. Diabetes and mitochondrial function: role of hyperglycemia and oxidative stress. Toxicol Appl Pharmacol. 2006; 212(2):167-78.
Sengupta B, Swenson J. Properties of normal and glycated human hemoglobin in presence and absence of antioxidant. Biochem Biophys Res Commun. 2005; 334(3):954-9
Shimada S, Tanaka Y, Ohmura C, Tamura Y, Shimizu T, Uchino H, et al. N-(carboxymethyl)valine residues in hemoglobin (CMV-Hb) reflect accumulation of oxidative stress in diabetic patients. Diabetes Res Clin Pract. 2005; 69(3):272-8.
Bousová I, Martin J, Jahodár L, Dusek J, Palicka V, Drsata J. Evaluation of in vitro effects of natural substances of plant origin using a model of protein glycoxidation. J Pharm Biomed Anal. 2005; 37(5):957-62.
Sindhu RK, Koo J, Roberts CK, Vaziri ND. Dysregulation of hepatic superoxide dismutase, catalase and glutathione peroxidase in diabetes: response to insulin and antioxidant therapy. Clin Exp Hypertens. 2004; 26(1):43-53.
Aksoy N, Vural H, Sabuncu T, Arslan O, Aksoy S. Beneficial effects of vitamins C and E against oxidative stress in diabetic rats. Nutr Res. 2005; 25(6):625-30.
Balasubashini MS, Rukkumani R, Viswanathan P, Menon VP. Ferulic acid alleviates lipid peroxidation in diabetic rats. Phytother Res. 2004; 18(4):310-14.
Coskun O, Kanter M, Korkmaz A, Oter S. Quercetin, a flavonoid antioxidant, prevents and protects streptozotocin-induced oxidative stress and β-cell damage in rat pancreas. Pharmacol Res. 2005; 51(2):117-23.
Yeh C, Yen G. Induction of hepatic antioxidant enzymes by phenolic acids in rats is accompanied by increased levels of multidrug resistanceassociated protein 3 mRNA expression. J Nutr. 2006; 136(1):11-15.
Almela L, Sánchez-Munoz B, Fernández-López JA, Roca MJ, Rabe V. Liquid chromatographic-mass spectrometric analysis of phenolics and free radical scavenging activity of rosemary extract from different raw material. J Chromatogr A. 2006; 1120(1):221-9.
Sotelo-Félix JI, Martinez-Fong D, Muriel P, Santillán RL, Castillo D, Yahuaca P. Evaluation of the effectiveness of Rosmarinus officinalis (Lamiaceae) in the alleviation of carbon tetrachloride-induced acute hepatotoxicity in the rat. J Ethnopharmacol. 2002; 81(2):145-54.
Amin A, Hamza AA. Hepatoprotective effects of Hibiscus, Rosmarinus and Salvia onazathioprineinduced toxicity in rats. Life Sci. 2005; 77(3):266-78.
Moreira AVB, Mancini-Filho J. Atividade antioxidante das especiarias mostarda, canela e erva-doce, em sistemas aquoso e lipídico. Nutrire. 2003; 25(3): 45-60
Swain T, Hills WE. The phenolic constituents of Punnus domestica. I-quantitative analysis of phenolic constituents. J Sci Food Agric. 1959; 10(1): 63-8.
Miller HE. Simplified method for evaluation of antioxidants. J Am Oil Chem Soc. 1971; 48(2):91.
Brand-Willians W, Cuvelier ME, Brest C. Use of free radical method evaluate antioxidant activity. Lebenson Wiss Technol. 1995; 28(1):25-30.
Ou B, Hampsch-Woodill M, Prior RL. Development and validation of am improved oxygem radical absorbance capacity assay using fluoescein as the fluorescent probe. J Agric Food Chem. 2001; 49(10):4619-26.
McCord JM, Fridovich I. Superoxide dismutase, an enzyme function for erythrhrocuprein (hemocuprein). J Biol Chem. 1969; 244(22): 6049-55.
Beutler E. Red cell metabolism: a manual of biochemical methods. 2nd ed. New York: Grune & Stratton; 1975
Sies H, Koch OR, Martino E, Boveris A. Increased biliary glutathione disulfide release in chronically ethanol treated rats. FEBS Lett. 1979; 103(2):287-90
Bradford MM. A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding. Anal Biochem. 1976; 72:248-54.
Ninfali P, Mea G, Giorgini S, Rocchi M, Bacchioccal M. Antioxidant capacity of vegetables, spices and dressings relevant to nutrition. Br J Nutr. 2005; 93(2):257-66.
Del Bano MJ, Castillo J, Benavente-Garcia O, Lorente J, Martían-Gil R, Acevedo C, et al. Radioprotective-antimutagenic effects of rosemary phenolics against chromosomal damage induced in human lymphocytes by γ-rays. J Agric Food Chem. 2006; 54(6):2064-8.
Cintra RMGC. Efeito antioxidante de especiarias: avaliação da salsa (Petroselium sativum Hoffm), cebolinha verde (Allium shoenoprasum L.), orégano (Origanum vulgare L.) e alecrim (Rosmarinus officinalis L.) [mestrado]. São Paulo: Universidade de São Paulo; 1998.
Giada MLR, Mancini-Filho J. Avaliação da atividade antioxidante in vitro de compostos fenólicos de alimentos. Nutrire. 2004; 28(8):91-107.
Dorman HJD, Peltoketo A, Hiltunen R, Tikkanen MJ. Characterisation of the antioxidant properties of de-odourised aqueous extracts from selected Lamiaceae herbs. Food Chem. 2003; 83(2):255-62.
Bae JW, Lee MH. Effect and putative mechanism of action of ginseng on the formation of glycated hemoglobin in vitro. J Ethnopharmacol. 2004; 91(1):137-40.
Bousová I, Martin J, Jahodár L, Dusek J, Palicka V, Drsata J. Evaluation of in vitro effects of natural substances of plant origin using a model of protein glycoxidation. J Pharm Biomed Anal. 2005; 37(5): 957-62.
Brownlee M. Biochemistry and molecular cell biology of diabetic complications. Nature. 2001; 414(6865):813-20.
Bravenboer B, Kappelle AC, Hamers FPT, Van Buren T, Erkelens DW, Gispen WH. Potential use of glutathione for the prevention and treatment of diabetic neuropathy in the streptozotocin-induced
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